Woerdeman (1933), Raven (1933) и Jacobson (1938а) для зародышей амфибий и птиц указали на неодинаковую интенсивность траты гликогена в клетках зачатков, дифференцирующихся с разной скоростью. В частности, клетки кишечной энтодермы куриного зародыша, по Jacobson, при прохождении их в бластоцель через губу бластопора теряют гликоген, потребляемый, очевидно, в метаболических процессах, связанных с дифференциацией (или детерминацией), и этим резко отличаются от клеток других зачатков, в частности от клеток желточной энтодермы, богатых гликогеном. Эти данные нуждаются в проверке, поскольку они связаны с несомненно ошибочным описанием архентерального впячения у зародыша цыпленка, посредством которого образуется будто бы кишечная энтодерма (критику такого представления о гаструляции у птиц см. А. Г. Кнорре, 1941). Интересные данные об изменениях содержания гликогена по мере дифференцировки различных эмбриональных зачатков у человеческих зародышей приведены Л. И. Фалиным (1951а, г, 1962). По наблюдениям Л. И. Фалина (1968) и А. Г. Се-меновой-Тян-Шанской (1968, 1969), содержание гликогена в гоно-цитах человеческих зародышей изменяется в зависимости от фазы их миграции. Л. И. Фалин (1968) считает исчезновение гликогена в гоноцитах одним из показателей их дифференциации в оогонии и сперматогонии. Клеточные органоиды — митохондрии и внутриклеточный сетчатый аппарат Голъджи — изучены слишком недостаточно и редко использовались как показатели степени дифференцированности клеточных элементов. Правда, на основании ряда исследований, выполненных с помощью методов световой микроскопии (например, Но-ven, 1910; В. Я. Рубашкин, 1910; Fananas, 1912; Nihoul, 1925; Б. А. Алексенко, 1930; Argeseanu et May, 1938; Л. И. Корочкин, 1964, и др.), можно сделать общий вывод, что в клетках малодифференцированных эмбриональных зачатков эти органоиды диффузно рассеяны в цитоплазме.